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게놈

Jan 12, 2024

분자정신의학(2023)이 기사 인용

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측정항목 세부정보

마리화나는 미국에서 널리 사용되는 향정신성 물질이며 지난 10년 동안 의료 및 기분전환용 합법화가 증가했습니다. 마리화나를 사용하는 개인의 수가 증가하고 있음에도 불구하고 후생적 요인과 최근의 누적 마리화나 사용 사이의 연관성을 조사하는 연구는 여전히 제한적입니다. 따라서 우리는 최근 및 누적 마리화나 사용과 DNA 메틸화 수준 사이의 연관성을 조사했습니다. Illumina MethylationEPIC BeadChip을 사용하여 두 시점에서 DNA 메틸화 프로파일링을 받도록 검사 연도(Y) 15년과 Y20에 수집된 전혈을 사용하는 젊은 성인의 관상 동맥 위험 개발 연구 참가자를 무작위로 선택했습니다. 최근 마리화나 사용은 각 시험에서 질의되었으며 Y0에서 Y15 및 Y20까지 누적 마리화나 사용을 추정하는 데 사용되었습니다. Y15(n = 1023)에서 최근 및 누적 마리화나 사용과 관련된 22개 및 31개의 메틸화 마커(FDR P ≤ 0.05)와 Y20(n = 883)에서 각각 132개 및 16개의 메틸화 마커를 관찰했습니다. 우리는 마리화나 사용과 관련하여 이전에 보고된 8개의 메틸화 마커를 복제했습니다. 우리는 Y15 및 Y20에서 최근 및 누적 사용과 관련된 640개의 cis-meQTL 및 198개의 DMR을 추가로 식별했습니다. 차별적으로 메틸화된 유전자는 세포 증식, 호르몬 신호 전달, 감염뿐만 아니라 정신분열증, 양극성 장애 및 물질 관련 장애와 관련된 경로에서 통계적으로 과다하게 나타났습니다. 우리는 중년 성인의 최근 누적 마리화나 사용과 관련된 수많은 메틸화 마커, 경로 및 질병을 확인하여 마리화나 사용과 후성유전체 간의 연관성에 대한 추가적인 통찰력을 제공했습니다. 이러한 결과는 마리화나가 후생유전체 및 관련 건강 상태에 미치는 역할에 대한 새로운 통찰력을 제공합니다.

마리화나는 미국에서 가장 일반적으로 사용되는 향정신성 물질 중 하나이며, 성인의 약 49%가 마리화나를 사용한 적이 있으며, 그중 19%는 지난 1년, 12%는 지난 달에 사용했습니다[1]. 마리화나 사용의 확산은 지난 수십 년 동안 증가했으며 더 많은 주에서 마리화나를 합법화함에 따라 마리화나 사용도 증가할 것으로 예상됩니다[2,3,4,5]. 의학적으로 마리화나는 화학요법으로 인한 메스꺼움 및 구토[6], 만성 신경병성 통증[7], 염증 상태[8, 9], 파킨슨병 증상[10] 및 간질[11]을 치료하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이러한 치료적 이점에도 불구하고 마리화나 사용은 단기(예: 단기 기억 및 운동 조정 장애, 판단력 변화, 정신병적 증상) 및 장기간 사용(예: 중독, 뇌 발달 변화, 신경인지 장애, 심혈관 및 호흡기 질환) [12, 13]. 또한 마리화나 사용은 정신 질환의 위험 증가와 관련이 있습니다 [14,15,16]. 합법화와 동시에 예상되는 사용 증가로 인해 마리화나 사용과 분자 또는 후성 유전적 메커니즘 사이의 연관성을 조사하는 연구는 마리화나가 건강 관련 결과에 미치는 단기 및 장기 영향에 대한 새로운 통찰력을 제공할 수 있습니다.

가장 많이 연구된 후생적 변형 중 하나인 DNA 메틸화는 메틸기의 추가 또는 제거를 통해 (게놈 서열을 변경하지 않고) 유전자 발현에 영향을 미치는 조절 과정입니다[17]. 이러한 변형은 환경 및 생활 방식 요인에 의해 유발될 수 있으며[18, 19], 이는 최근 및 누적 노출에 대한 혈액 기반 바이오마커 역할을 할 수 있습니다. 또한 DNA 메틸화의 수정 가능한 특성을 통해 후성유전체에 대한 노출로 인한 변화와 시간 경과에 따른 변동성을 조사할 수 있으며 잠재적으로 동적 및/또는 안정적인 바이오마커를 식별할 수 있습니다[20, 21]. 이러한 메틸화 변화는 최근 누적된 마리화나 사용에 대한 바이오마커 역할을 할 수 있으며, 결과적으로 하류 건강 상태에 영향을 미치는 분자 및 생물학적 과정에 대한 마리화나의 급성 및 부가적 영향에 대한 우리의 이해를 더욱 발전시킬 수 있습니다.

5% or extremely low intensity of bisulfite conversion probes (defined as less than 3 times the standard deviation of the intensity across samples below the mean intensity) were removed from further analysis. Additionally, 95 samples were identified as extreme outliers as determined by the average total intensity value [intensity of unmethylated signals (U) + intensity of methylated signals (M)] or β value [M/(U + M + 100)] across all markers and Tukey's method [30]. Model-based correction was applied using ENmix and dye bias correction was conducted using RELIC [31]. M or U intensities for Infinium I or II probes underwent quantile normalization separately, respectively. Low-quality methylation markers and β value outliers, as defined by Tukey's method, were set to missing. After applying these criteria, 1042 and 957 samples at Y15 and Y20 remained for downstream analysis, respectively./p>